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Prick-tests aux trophallergènes (PT) : influence de la durée de conservation des échantillons alimentaires sur la reproductibilité des résultats des PT

Promoteur : Centre Hospitalier Régional d'Orléans

Titre et résumé traduits de l’anglais par le portail, à partir de la fiche publiée par le registre source, le 14 septembre 2026. Traduction automatique, sans relecture médicale : elle ne modifie ni n’interprète le contenu ; en cas de doute, le texte original fait foi.

Texte original (anglais)

Trophallergen Prick Tests (PT) : Influence of Food Sample Shelf Life on the Reproducibility of PT Results

Prick tests (PT) are the standard skin tests used in the investigation of immediate IgE-mediated food allergies. Their use as a first-line tool in allergological investigations is strongly recommended by the European Academy of Allergy and Clinical Immunology (EAACI). These tests involve locally reproducing histamine release manifestations in the epidermis by superficially introducing an allergen to confirm or rule out its role in the onset of clinical symptoms compatible with an allergy. During the diagnostic management and follow-up of patients with food allergies, the technique used is the "prick to prick" method, due to the lack of reliable access to many standardized commercial food extracts. This method involves piercing the food with a sterile lancet (to deposit food content on its surface) and then making a superficial skin puncture with the same device on the anterior surface of the forearm to introduce a tiny fraction of the food and its proteins into the epidermis, where mast cells are present. Simultaneously, a positive control and a negative control are performed. The tests are read after 15 to 20 minutes by measuring the size in millimeters of the resulting papules and erythema. A PT for the tested allergen is considered positive if the average diameter of the resulting papule is 3 mm or more and/or at least half the size of the positive control papule. The procedure is well-tolerated, allowing it to be performed at any age, in both hospital and outpatient settings. The risk of a systemic reaction has been evaluated at 0.008%, with no severe reactions observed. This method, performed with native foods (unprocessed food, uncontaminated foods), either raw or cooked (depending on the nature of the allergen being tested), is preferred over the use of commercial extracts (standardized commercial allergen preparations) due to its better sensitivity and specificity, the high cost of commercial extracts, and the lack of commercial extracts for certain foods. For practical reasons, given the wide variety of possible allergens, and to most accurately reproduce the exposure that caused the reaction, the most common approach is to ask the patient to bring their own foods for testing. These foods should be brought in a fresh state. However, situations where the patient is offered a food PT but does not have fresh native foods are common. Indeed, many patients forget to bring them. Similarly, during a consultation to explore a respiratory or drug allergy, the interview may lead to the detection of a food allergy that needs to be tested at the same time. Given the delays in allergology consultations, the severity of food allergy symptoms, and the potential risk of delayed diagnosis, all allergists involved in managing food allergies are led to create a library of food samples stored either in a dry state (e.g., nuts, peanuts, cereal flours) or frozen for perishable foods (meats, shellfish, fruits, vegetables). To our knowledge, after reviewing the literature, no guidelines for best practices regarding the storage of these food samples for PT purposes have been established by scientific societies. Moreover, while the impact of freezing and thawing methods on the denaturation of food proteins is known, the effect of freezing and its duration on the sensitivity and specificity of PT is poorly understood. The objective of our study is to evaluate the reproducibility of PT results between those performed with fresh foods and those performed with preserved foods at different storage dates in participants who have experienced anaphylaxis of at least grade 2 according to the Ring and Messmer classification.

Les prick-tests (PT) sont les tests cutanés de référence utilisés dans l'exploration des allergies alimentaires immédiates médiées par les IgE. Leur utilisation en première intention dans l'exploration allergologique est fortement recommandée par l'Académie européenne d'allergologie et d'immunologie clinique (EAACI). Ces tests consistent à reproduire localement, au niveau de l'épiderme, des manifestations de libération d'histamine en introduisant superficiellement un allergène, afin de confirmer ou d'écarter son rôle dans la survenue de symptômes cliniques compatibles avec une allergie. Lors de la prise en charge diagnostique et du suivi des patients présentant des allergies alimentaires, la technique utilisée est la méthode du « prick to prick », en raison du manque d'accès fiable à de nombreux extraits alimentaires commerciaux standardisés. Cette méthode consiste à piquer l'aliment avec un vaccinostyle stérile (afin de déposer du contenu alimentaire à sa surface), puis à réaliser une ponction cutanée superficielle avec le même dispositif sur la face antérieure de l'avant-bras, afin d'introduire une infime fraction de l'aliment et de ses protéines dans l'épiderme, où sont présents les mastocytes. Simultanément, un témoin positif et un témoin négatif sont réalisés. Les tests sont lus après 15 à 20 minutes, en mesurant la taille en millimètres des papules et de l'érythème obtenus. Un PT est considéré positif pour l'allergène testé si le diamètre moyen de la papule obtenue est supérieur ou égal à 3 mm et/ou au moins égal à la moitié de la taille de la papule du témoin positif. La procédure est bien tolérée, ce qui permet de la réaliser à tout âge, aussi bien en milieu hospitalier qu'en ambulatoire. Le risque de réaction systémique a été évalué à 0,008 %, sans réaction sévère observée. Cette méthode, réalisée avec des aliments natifs (aliments non transformés, non contaminés), crus ou cuits (selon la nature de l'allergène testé), est préférée à l'utilisation d'extraits commerciaux (préparations d'allergènes commerciaux standardisées), en raison de sa meilleure sensibilité et spécificité, du coût élevé des extraits commerciaux, et de l'absence d'extraits commerciaux pour certains aliments. Pour des raisons pratiques, compte tenu de la grande variété d'allergènes possibles, et afin de reproduire le plus fidèlement possible l'exposition ayant provoqué la réaction, l'approche la plus courante consiste à demander au patient d'apporter ses propres aliments pour les tests. Ces aliments doivent être apportés à l'état frais. Toutefois, les situations où un PT alimentaire est proposé au patient sans qu'il dispose d'aliments natifs frais sont fréquentes. En effet, de nombreux patients oublient de les apporter. De même, lors d'une consultation destinée à explorer une allergie respiratoire ou médicamenteuse, l'interrogatoire peut conduire à détecter une allergie alimentaire devant être testée en même temps. Compte tenu des délais de consultation en allergologie, de la sévérité des symptômes d'allergie alimentaire, et du risque potentiel de retard diagnostique, tous les allergologues impliqués dans la prise en charge des allergies alimentaires sont amenés à constituer une banque d'échantillons alimentaires, conservés soit à l'état sec (par exemple, fruits à coque, arachides, farines de céréales), soit congelés pour les aliments périssables (viandes, crustacés, fruits, légumes). À notre connaissance, après revue de la littérature, aucune recommandation de bonnes pratiques concernant la conservation de ces échantillons alimentaires à des fins de PT n'a été établie par les sociétés savantes. De plus, si l'impact des méthodes de congélation et de décongélation sur la dénaturation des protéines alimentaires est connu, l'effet de la congélation et de sa durée sur la sensibilité et la spécificité des PT est mal compris.

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